D-熒光素鉀鹽是熒光素酶 (Luc) 的天然底物，對螢火蟲產生典型的黃綠光進行催化。該反應產生的 560 nm 化學發光在幾秒鐘內達到峰值，當底物熒光素過量時，光輸出與熒光素酶濃度成正比。熒光素酶 (luc) 基因是研究和活性分子篩選的常用報告基因。

D-熒光素鉀鹽基本特性：

1CAS NO：115144-35-9

2化學名：4,5-Dihydro-2-(6-hydroxy-2-benzothiazolyl)-4-thiazolecarboxylic acid potassium salt,D-Luciferin firefly, potassium salt

3分子式：C11H7N2O3S2K

4分子量：318.42 g/mol

5純度：＞99% (HPLC)，分子生物學級（超純）

6外觀：淺黃色至黃色粉末7）溶解性：溶于水（60 mg/ml）

使用方法：

A．體外生物發光檢測

1儲存液制備用蒸餾水溶解D-熒光素鉀鹽，配制成15mg/ml的儲存液（100×），混勻后立即使用或分裝于-20℃或-80℃凍存，避免反復凍融。建議使用的工作液濃度為150µg/ml（相當于468µM）。

2熒光素酶反應緩沖液制備配方【1×，參考Yuichi Oba, et al., 2003】：100mM Tris-HCl（pH 7.8），5mM MgCl2，250µM CoA，150µM ATP。具體緩沖液組成可參考其他文獻資料來調整。按照以上配方制備熒光素酶反應緩沖液（2×）。

3收集細胞裂解上清（熒光素酶表達）根據需要檢測的細胞類型，選擇合適的裂解液進行細胞裂解，離心收集上清后續檢測待用。

4螢火蟲熒光信號檢測

【注①】：螢火蟲熒光信號的檢測方法大體上取決于冷光測定儀（luminometer）類型（是手動型熒光計、單管注射型或者酶標板讀數型熒光計）。根據特定發光測定儀，來考慮注射用量和程序設置。

【注②】：需設置不含熒光素酶的孔（用作陰性對照），以測定背景熒光。

例：注射式冷光測定儀（injectible luminometer，單樣或微孔板，200µl終體積）。

a吸取100µl熒光素酶反應緩沖液（2×）到一干凈的冷光測定儀比色皿或96孔板的各孔（最好使用全白平底的96孔板）；

b吸取50~98µl裂解上清到皿或孔內；

c如果有需要，用水來補足使得總體積到198µl；

d設置程序注射2µl熒光素儲存液（使工作濃度150µg/ml），程序：2~5秒延遲（delay），之后10s測定。

B．活體成像分析

1用無菌的PBS（w/o Mg2+）或者DPBS（w/o Mg2+）配制D-熒光素（鉀鹽）工作液（15mg/ml），0.2µm濾膜過濾除菌。混勻后立即使用或分裝于-20℃或-80℃凍存，避免反復凍融。一旦使用，放到4℃解凍，保持冰冷且避光。

2注射量取決于注射方式，具體如下：注射方式劑量靜脈注射（25-27 gauge針頭）    按10µl/g體重濃度，加入相應體積的15mg/ml熒光素工作液    腹腔注射（25-27 gauge針頭）按10µl/g體重濃度，加入相應體積的15mg/ml熒光素工作液肌肉注射（27 gauge針頭）50µl，濃度為1-2mg/ml熒光素工作液鼻內注射（pipette）50µl，濃度為3mg/ml熒光素工作液。

3注射入體內10-20 min（待光信號達到較好的穩定平臺期），再進行成像分析。注：建議對每只動物模型都需要建立熒光素酶動力學曲線，從而確定最高信號檢測時間和信號平臺期。